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The expression characteristics of PwRhomboid gene in Picea wilsonii and its effects on drought resistance

  • YANG Peixin ,
  • LIU Kui ,
  • LI Xingfen ,
  • WANG Qingqing ,
  • CAO Yibo ,
  • ZHANG Lingyun , *
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  • School of Forestry, Beijing Forestry University, National Key Laboratory of Efficient Production of Forest Resources, State Key Laboratory of Forest Cultivation and Protection of Ministry of Education, Beijing 100083, China

Received date: 2024-01-15

  Online published: 2024-09-27

Abstract

By sequencing and analyzing the transcriptome of Picea wilsonii, the potential drought-related gene PwRhomboid was screened out, and its functional characteristics of drought resistance in Picea wilsonii were analyzed. Through bioinformatics analysis, the amino acid sequence and homologous gene of PwRhomboid were compared. The responses of PwRhomboid to different abiotic stresses and hormones were analyzed by RT-qPCR. Instantaneous transformation of tobacco leaves was conducted to detect the subcellular localization of PwRhomboid protein. PwRhomboid transgenic strains of Arabidopsis and potato were obtained and their drought phenotypes were verified. The results showed that the amino acid sequence of PwRhomboid has significant difference with those of its homologous species at N-terminus, but shows high similarity and good conservation at C-terminus. PwRhomboid protein is mainly localized on cell membrane. The expression level of PwRhomboid was significantly induced by drought, low temperature and abscisic acid, with the highest expression level observed in mature leaves.PwRhomboid can improve the drought resistance in transgenic Arabidopsis and potato. After drought treatment, compared with the control group Arabidopsis WT and pCM1205 strains, PwRhomboid overexpression strains PwRhomboid-L1 and PwRhomboid-L2 had higher survival rates, chlorophyll fluorescence Fv/Fm and ΦPSⅡ. After polyethyleneglycol simulated drought treatment, the overexpression strains PwRhomboid-L3 and PwRhomboid-L4 resulted in higher potato seedling heights compared to the wild-type. The results showed that the expression level of PwRhomboid is affected by drought and hormones, and overexpression of PwRhomboid could improve the drought resistance of Arabidopsis and potato.

Cite this article

YANG Peixin , LIU Kui , LI Xingfen , WANG Qingqing , CAO Yibo , ZHANG Lingyun . The expression characteristics of PwRhomboid gene in Picea wilsonii and its effects on drought resistance[J]. Journal of Shaanxi Normal University(Natural Science Edition), 2024 , 52(5) : 1 -11 . DOI: 10.15983/j.cnki.jsnu.2024221

菱形(Rhomboid)蛋白属于丝氨酸蛋白酶家族,是广泛存在于各种生物中的保守性膜内蛋白;菱形蛋白表现出多种底物特异性,可通过识别结合不同的底物,在植物生长发育调节方面发挥重要作用[1-2]。杨洋[3]在腊梅(Chimonanthus praecox L.)中初步探究了CpRhomboid基因的功能表达,发现 CpRhomboid基因对植物的耐盐性不产生影响,可能通过调节MAPKK基因的表达进而参与植物的抗旱性调节;赵莹[4]在大白菜(Brassica rapa L.)中鉴定出1个可能影响雄性不育的基因BrRBL3,其与Rhomboid同源,在花粉中表达量最高,该基因异源表达可使雄性不育的拟南芥(Arabidopsis thaliana)花粉正常发育;Knopf等[5]发现拟南芥AtRBL6可能响应非生物胁迫。此外,有研究表明,在幼苗期冷处理可以诱导AtRBL10,说明AtRBL10可以响应冷胁迫[6];也有研究显示,AtRBL10的表达量在热胁迫后上调,其表达相关基因中有29%响应热胁迫[5]。目前,关于菱形蛋白的研究主要集中在医学领域[7-10],在植物研究中少有报道,其响应非生物胁迫的机制尚不清楚,亟需进一步研究和探索。
青杄(Picea wilsonii)是松科(Pinaceae)云杉属(Picea)的常绿乔木。青杄树形美观、树干挺拔、树冠茂密,为北方地区重要的园林绿化树种[11]。从地理分布来看,青杄为喜温树种,更适宜于清凉、湿润、通透性好的气候条件和酸性土壤条件,对水肥要求严格,对干旱胁迫较为敏感[12]。干旱胁迫是限制青杄地理分布和正常生长发育的重要因素之一。目前,对青杄的研究更多集中在育苗生长和群落特征等方面[13-15],对其响应干旱胁迫的研究较少,而在分子层面探索耐旱基因调控青杄响应干旱胁迫具有重要意义。
课题组前期通过对青杄转录组进行测序,筛选鉴定出多个青杄响应干旱胁迫的基因,其中PwRhomboid基因在干旱胁迫下表达量显著上调,表明其可能是影响青杄响应干旱胁迫的潜在候选基因[16-18] 。本研究通过生物信息学、RT-qPCR、瞬时转化烟草叶片、获得拟南芥和马铃薯的PwRhomboid转基因株系并进行干旱表型验证,分析青杄PwRhomboid基因在耐旱方面的功能特征,为解析青杄的耐旱机制奠定理论基础。

1 材料与方法

1.1 材料

将保存于4 ℃冰箱的青杄种子用赤霉素(gibberellins,GA)溶液浸泡24 h,使用蒸馏水多次润洗。将润洗干净的种子分散在放有湿润滤纸的玻璃培养皿中,置于21 ℃的光照培养箱中培养,光照16 h、黑暗8 h,始终保持水分充足。待种子萌发后移栽至育苗容器中(m营养土m蛭石=1∶1),放置于温室生长,定期浇水防虫。
所用野生型拟南芥为哥伦比亚野生型(wild-type,WT)。拟南芥种子先用75%的酒精处理5 min,再用5%的次氯酸钠溶液处理15 min,接着使用灭菌蒸馏水反复润洗。将种子播在MS固体培养基上,置于4 ℃黑暗环境培养3 d,取出后放在光照培养箱中继续培养,待长出4片真叶后,将幼苗移栽至育苗盆中生长,定期浇水防虫。
所用烟草为本氏烟草。将烟草种子撒播在混合土(m营养土m蛭石m珍珠岩=2∶1∶1)中,覆膜放置于温室,3 d后揭膜正常生长,约2周后将幼苗单株移栽,定期浇水防虫。
所用马铃薯组培苗为银川市农林科学院赠送,品种为“大西洋”。

1.2 方法

1.2.1 载体构建及转基因植株培养

使用限制性内切酶Sma Ⅰ和EcoR Ⅰ酶切pCM1205载体,纯化回收后,使用T4连接酶将酶切产物与目的基因PwRhomboid过夜连接,将连接好的PwRhomboid-pCM1205重组载体转化根癌农杆菌感受态GV3101中,保存备用。
采用浸花法对WT进行侵染[19],待种子成熟后收集种子。将收集的种子点播在含有潮霉素(40 μg/mL)和羧卞霉素(50 μg/mL)的MS固体培养基上,筛选阳性苗(能够长出的4叶嫩绿幼苗),将阳性苗移入土中生长,等待收种。如此重复至收获T3代纯合阳性植株,拟南芥阳性植株的鉴定参照李兴芬[18]的方法。取WT、pCM1205和阳性植株的叶片提取RNA,反转录为cDNA,通过RT-qPCR进行表达量检测,内参基因为拟南芥AtActin。选择PwRhomboid基因表达量较高的2个阳性植株进行后续实验。
配置pCM1205农杆菌浸染液,在超净工作台中将马铃薯切块,放入浸染液中,摇晃8 min,取出马铃薯小块,放置于滤纸上吸除表面多余菌液,置于MS固体培养基(含100 μmol/L 乙酰丁香酮)中黑暗培养2 d。然后,使用300 mg/L 头孢霉素水和无菌水洗菌后,放入筛选培养基(1/2 MS+1 mg/L萘乙酸+250 mg/L头孢霉素)中生长。取部分叶片及茎段提取RNA,反转录为cDNA,通过RT-qPCR鉴定阳性植株。马铃薯阳性植株的鉴定参照李兴芬[18]的方法。
研究所用引物序列信息见表1
表1 引物序列信息

Tab.1 Information of primer sequences

用途 引物名称 引物序列(5'-3')
RT-qPCR AtActin-F GGTAACATTGTGCTCAGTGGTGG
AtActin-R AACGACCTTAATCTTCATGCTGC
PwEF1α-RT-F AACTGGAGAAGGAACCCAAG
PwEF1α-RT-R AACGACCCAATGGAGGATAC
PwRhomboid-RT-F GGAGAAATGGGGAAGCATGTG
PwRhomboid-RT-R GCAAAGAAGCCTCTACCCATTAAC
载体构建 pEASY-T1-PwRhomboid-F GGCGATTCCTTGCGTGTG
pEASY-T1-PwRhomboid-R CTGCAAAGAAGCCTCTACCCATTA
pCM1205-PwRhomboid-F CGCGGATCCATGGGGAAGCATGTGCAAATG
pCM1205-PwRhomboid-R TCCCCCGGGTTAACTGCAGAGTTGGGAACAAAG

1.2.2 PwRhomboid的表达特性分析

选用温室中生长状况良好、约8周的青杄幼苗,进行非生物胁迫处理和激素处理,包括干旱处理、低温处理(4 ℃)、高温处理(42 ℃)、盐胁迫处理(200 mmol/L NaCl)、脱落酸(abscisic acid,ABA)处理(100 μmol/L ABA)、赤霉素处理(400 μmol/L GA)、茉莉酸甲酯(methyl jasmonate,MeJA)处理(100 μmol/L MeJA)和水杨酸(salicylic acid,SA)处理(500 μmol/L SA)。分别在处理0、3、6、12 h时取样,以无菌水处理的幼苗作为空白对照,分析各组中PwRhomboid基因在根、茎、幼嫩叶、成熟叶、花粉和种子中的表达情况,每组生物学重复3次。提取青杄幼苗RNA,反转录为cDNA,通过RT-qPCR测定PwRhomboid的表达情况,选择PwEF1α为内参基因。

1.2.3 亚细胞定位

将含有PwRhomboid-pCM1205重组载体的农杆菌活化,用枪头蘸取部分菌加入液体抗性培养基中,在28 ℃、200 r/min的摇床中培养至OD值为0.8。菌液在5 000 r/min离心机中离心10 min集菌,使用烟草缓冲液重悬菌体,调OD值为0.5,静置2 h后注射烟草叶片,正常生长2 d后用激光共聚焦显微镜在激发光488 nm条件下观察转化的烟草叶片,并拍照保留。

1.2.4 拟南芥和马铃薯干旱表型实验

拟南芥幼苗表型:将WT、pCM1205、PwRhomboid-L1、PwRhomboid-L2种子分别播在含有不同物质的量浓度(0、100、200、300 mmol/L)甘露醇的MS固体培养基上,4 ℃黑暗环境春化3 d。取出春化后的种子转移到光照培养箱中培养,每天观察种子的萌发情况并记录数据[20]
拟南芥成苗干旱表型:将WT、pCM1205、PwRhomboid-L1、PwRhomboid-L2种子播种在MS固体培养基上,待长出4片幼嫩叶片后,移入土壤中继续生长。进行自然干旱处理,待成苗出现萎蔫干枯状态时,复水3 d,统计存活率并拍照记录。
马铃薯组培苗干旱表型:将野生型马铃薯Y5、PwRhomboid-L3、PwRhomboid-L4分别移栽在含有0%、15%、20%和25% PEG6000的MS固体培养基上,进行干旱表型实验,统计植株苗高并拍照记录。

1.2.5 生理指标测定

叶绿素荧光测定参考高贵宾等[21]的方法。使用PAM-2500便携式荧光仪对拟南芥进行叶绿素荧光测定,选取正常生长和干旱处理下的拟南芥叶片,分别在光适应和暗适应条件下处理30 min,测定相关参数,包括最大荧光值(Fm)、初始荧光值(F0)、实时荧光值(F)和光下最大荧光值(Fm'),按照(Fm-F0)/Fm计算有效光化学效率Fv/Fm(Fv=Fm-F0),按照(Fm'-F)/Fm'计算实际光化学量子效ΦPSⅡ[22]。每个处理设置3个生物学重复。

1.2.6 数据处理

使用SPSS软件对数据进行显著性分析,使用SigmaPlot 14.0软件作图。

2 结果分析

2.1 PwRhomboid多序列比对与进化树分析

PwRhomboid及其同源基因的氨基酸序列进行多序列比对,发现PwRhomboid的氨基酸序列在N端与11个同源物种的氨基酸序列具有较大差异,在C端相似度较高,保守性较好(图1a)。利用MEGA7软件构建PwRhomboid及其同源基因氨基酸序列的系统进化树,结果显示青杄与银杏(Ginkgo biloba)、北美云杉(Picea sitchensis)的遗传距离比较近(图1b)。
图1 不同物种中Rhomboid的多序列比对与系统进化树分析

Fig.1 Sequence alignment and phylogenetic tree analysis of Rhomboid in different species

2.2 PwRhomboid的表达特性分析

通过PwRhomboid的表达量变化反映温室培育8周且生长状况良好的青杄幼苗对不同非生物胁迫处理(干旱、低温、高温、盐)和激素处理(ABA、GA、SA、MeJA)的响应情况。结果显示,在干旱处理条件下,随着处理时间的增加,PwRhomboid的表达量逐渐升高,处理12 h时其表达量约为对照组的28.7倍(图2A);在低温处理条件下,PwRhomboid的表达量在处理3 h时上调最明显,为对照组的3.5倍(图2B);在高温处理条件下,PwRhomboid的表达量在12 h时达到对照组的1.7倍(图2C);PwRhomboid对盐胁迫无明显响应(图2D)。上述结果说明,PwRhomboid的表达受干旱胁迫诱导最为强烈。
图2 逆境及激素处理对PwRhomboid基因表达量的影响

注:不同小写字母代表组间差异显著(P<0.05)。

Fig.2 The effects of adversity and hormone treatments on the expression of PwRhomboid

在进行ABA和SA处理时,PwRhomboid的表达量都呈现出先上升再下降的趋势,且均在3 h时表达量最大(图2E2F);在进行GA处理时,PwRhomboid的表达量呈下降趋势,即GA能够抑制PwRhomboid的表达(图2G);在进行MeJA处理时,PwRhomboid的表达量在6 h时达到最大,为对照组的1.4倍(图2H)。
为进一步探究PwRhomboid的功能,使用RT-qPCR测定PwRhomboid在青杄不同部位的表达水平。结果显示,PwRhomboid在成熟叶中的表达量最高,其次是花粉和种子,在茎中的表达量最低(图2I)。

2.3 亚细胞定位

通过瞬时转化烟草叶片对PwRhomboid蛋白进行亚细胞定位分析。将含有pCM1205-GFP和PwRhomboid-GFP表达载体的农杆菌转化进烟草叶片,以pCM1205-GFP为对照组,PwRhomboid-GFP为实验组,观察绿色荧光蛋白(green fluorescent protein,GFP)定位情况,结果如图3所示。可以看出,在对照组的细胞膜、细胞质和细胞核中都有GFP绿色荧光,而在瞬转PwRhomboid-GFP烟草叶片细胞的细胞膜上能观察到GFP荧光,说明PwRhomboid蛋白主要定位于细胞膜上。
图3 PwRhomboid在烟草叶片中的亚细胞定位

注:PwRhomboid -GFP为PwRhomboid与GFP标签的融合蛋白;网络版为彩图。

Fig.3 Subcellular localization of PwRhomboid in tobacco leaves

2.4 过表达PwRhomboid能够提高干旱胁迫下拟南芥种子的萌发

为探究干旱胁迫下PwRhomboid对拟南芥种子萌发的影响,将野生型(WT)、空载株系(pCM1205)和过表达株系(PwRhomboid-L1、PwRhomboid-L2)的拟南芥种子播种在含有不同物质的量浓度(0、100、200、300 mmol/L)甘露醇的MS固体培养基中,连续8 d统计各株系种子的萌发情况。结果表明,在不含甘露醇的培养基中,WT、pCM1205和过表达PwRhomboid的拟南芥种子萌发没有明显差异(图4a);使用100 mmol/L甘露醇处理后,WT、pCM1205种子的萌发率分别降低15.1%、16.4%,而PwRhomboid-L1种子的萌发率没有变化,PwRhomboid-L2种子的萌发率降低1.8%(图4b);使用200 mmol/L甘露醇处理后,WT、pCM1205种子的萌发率分别降低38.2%、30.6%,PwRhomboid-L1、PwRhomboid-L2种子的萌发率分别降低6.3%、9.2%(图4c);使用300 mmol/L甘露醇处理后,所有株系种子的萌发都被抑制,但过表达株系PwRhomboid-L1和PwRhomboid-L2种子的萌发率分别比野生型种子高27.1%和21.3%(图4d)。以上结果表明,过表达PwRhomboid能够提高拟南芥对由甘露醇引起的干旱胁迫的耐受能力。
图4 不同浓度甘露醇处理后不同株系拟南芥种子的萌发率

Fig.4 Arabidopsis seed germination rates of different lines treated with mannitol of different concentrations

2.5 过表达PwRhomboid能够提高拟南芥成苗的耐旱性

为进一步研究PwRhomboid在响应干旱胁迫中的作用,将WT、pCM1205和PwRhomboid过表达的拟南芥植株进行干旱处理。结果表明,干旱处理20 d后,WT和pCM1205株系的生长状态更差,萎蔫现象更明显,叶片枯萎发黄更严重。复水3 d后,PwRhomboid过表达株系大部分能够恢复,存活率达90%,但WT和pCM1205株系的存活率只有20%(图5A5B)。
图5 过表达PwRhomboid增强拟南芥植株耐旱性

注:不同小写字母代表组间差异显著(P<0.05)。网络版为彩图。

Fig.5 Overexpression of PwRhomboid enhances drought tolerance in Arabidopsis plants

RT-qPCR结果显示,在WT、pCM1205株系中未检测到PwRhomboid的表达。设PwRhomboid-L2中PwRhomboid的相对表达量为1,在PwRhomboid-L1中PwRhomboid的相对表达量为10.27(图5C)。正常情况下,WT、pCM1205株系和PwRhomboid过表达株系没有明显差异;干旱处理后,WT、pCM1205株系和PwRhomboid过表达株系的Fv/FmΦPSⅡ都有所降低,但WT和pCM1205株系降低更明显(图5D5E)。以上结果表明,在拟南芥中过表达PwRhomboid基因增强了转基因拟南芥植株的耐旱性。

2.6 过表达PwRhomboid能够提高马铃薯的干旱耐受性

为验证PwRhomboid在不同物种中的耐旱功能,将PwRhomboid转化马铃薯,进行干旱处理,将野生型(Y5)和PwRhomboid过表达株系(PwRhomboid-L3、PwRhomboid-L4)的马铃薯继代苗分别接种在含有0%、15%、20%、25% PEG6000的MS培养基中。结果表明,在不添加PEG6000的对照组中,不同株系的生长状态没有明显区别。随着PEG6000添加量的增加,各株系的生长都受到不同程度地抑制。对不同株系的苗高进行统计,发现在15% PEG6000处理下,野生型、PwRhomboid-L3、PwRhomboid-L4的苗高分别为3.74 cm、6.85 cm、7.98 cm;在25% PEG6000处理下,野生型、PwRhomboid-L3、PwRhomboid-L4的苗高分别为3.50 cm、4.27 cm、4.54 cm,PwRhomboid过表达株系的苗高始终比野生型高(图6)。以上结果表明,PwRhomboid能够提高马铃薯对干旱胁迫的抵抗能力,且能在多种物种中发挥植物耐旱性。
图6 过表达PwRhomboid增强马铃薯的耐旱性

注:不同小写字母代表组间差异显著(P<0.05)。网络版为彩图。

Fig.6 Overexpression of PwRhomboid enhances drought tolerance in potatoes

3 讨论

膜蛋白是细胞膜结构的重要组成部分,其在很大程度上决定着植物的信息传导、物质交换、免疫应答等生命活动[23]。大量研究发现,膜蛋白与植物响应干旱胁迫具有紧密联系[24-27],而菱形蛋白被认为是自然界中分布最广泛的膜蛋白[28]。菱形蛋白是常见的膜内丝氨酸蛋白酶,菱形基因存在于所有生物体中[29]。有研究表明,拟南芥中菱形蛋白AtRBL10能够响应冷胁迫[6]。本研究通过RT-qPCR实验发现PwRhomboid可以响应干旱胁迫,在干旱处理12 h时PwRhomboid基因的表达量升高28.7倍;同时发现PwRhomboid也会响应低温胁迫,说明PwRhomboid可能参与干旱、低温应答途径。植物激素在植物响应干旱胁迫中发挥着重要作用,如ABA、GA等[30-32];在拟南芥中,AtRBL10可能影响茉莉酸信号传导[33]。因此,本研究检测了ABA、GA、SA、MeJA处理对PwRhomboid相对表达量的影响,结果表明PwRhomboid基因对ABA、SA诱导有响应。此外,本研究中PwRhomboid在青杄成熟叶中的表达量最高,在根和茎中表达量较低,推测PwRhomboid基因可能参与调控植物的叶片发育;在腊梅(Chimonanthus praecox L.)中也发现CpRhomboid可以调控植物叶和花的发育[3]。此前,在对拟南芥的相关研究中发现,Rhomboid蛋白的定位不尽相同,AtRBL1和AtRBL2定位于高尔基体,并在所有植物组织中表达[34];而AtRBL8和AtRBL9则定位在叶绿体[35]。本研究发现PwRhomboid蛋白主要定位于细胞膜,其可能参与细胞质膜间的反应。
为验证PwRhomboid在响应植物干旱胁迫中的功能,本研究在拟南芥和马铃薯中转化PwRhomboid并获得过表达植株。经干旱处理后,PwRhomboid过表达拟南芥PwRhomboid-L1和PwRhomboid-L2的生长状况良好,而WT和pCM1205 株系的叶片严重萎蔫;复水后,过表达植株的存活率显著高于WT和pCM1205植株,说明PwRhomboid能够提高植物在干旱胁迫下的存活率。干旱胁迫会影响植物的ROS通路,进而影响植物的光合作用和光化学反应速率[36-37]。最大光化学效率(Fv/Fm)和实际光化学效率(ΦPSⅡ)是使用最广泛的、能够表示光化学反应状况的叶绿素荧光参数。在干旱胁迫下,Fv/FmΦPSⅡ会降低,Fv/FmΦPSⅡ数值越高说明植物光合作用受到胁迫的影响越小,生长状态越好;数值越低说明光合作用受到胁迫的影响越大,生长状态越差[38-40]。本研究的组织定位表达分析显示,PwRhomboid在青杄成熟叶中高表达,推测其通过叶片参与调节响应并提高植物耐旱性。在正常条件下,WT、pCM1205株系和PwRhomboid过表达株系没有明显差异;干旱处理后,WT、pCM1205株系及PwRhomboid过表达株系的Fv/FmΦPSⅡ虽然都有所降低,但WT和pCM1205株系降低更明显,说明过表达PwRhomboid植株受到干旱胁迫的影响更小,对干旱胁迫的抗性更强。使用PEG模拟对转基因马铃薯进行干旱表型实验,发现PwRhomboid过表达株系PwRhomboid-L3、PwRhomboid-L4具有比野生型更高的苗高,表明PwRhomboid能够提高马铃薯对干旱胁迫的耐受能力。在本研究的基础上,后期仍需进一步完善PwRhomboid基因的耐旱表型实验及相关生理指标检测等,深入探索PwRhomboid基因的耐旱机制。

4 结论

本研究发现PwRhomboid基因受到干旱、低温等逆境胁迫及ABA、SA等激素的诱导,PwRhomboid蛋白主要定位于细胞膜,在拟南芥和马铃薯中过表达PwRhomboid能够提高转基因植株的耐旱性。
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